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神经系统动物模型制备承诺守信

发布者:南京英瀚斯生物科技有限公司  时间:2020-7-18 






大鼠脑缺血再灌注模型

造模方法

大鼠麻zui仰卧固定于恒温手术台上。暴露颈总动脉颈cca,分离颈内动脉ica和颈外动脉eca。cca近心端结扎并另备线,ica远端放置微型动脉夹,在cca靠近分叉处插入鱼线,即线栓由颈内动脉分叉处计长度为1.85±0.05cm,说明丝线头端己到达ica分支mca以和大脑前动脉aca的分叉处,阻断了同侧ica和经aca来自对侧ica的血供,缺血1h。







手术造模图片

病理判定图片


实验动物的分组


(一)分组的原则:进行动物实验时,经常需要将选择好的实验动物按研究的需要分成若干组。动物分组应按随机分配的原则,使每只动物都有同等机会被分配到各个实验组与对照组中去,以避免各组之间的差别,影响实验结果,---是进行准确的统计检验,必须在随机分组的基础上进行。

每组动物数量应按实验周期长短、实验类型及统计学要求而定。如果是慢性实验或需要定期处死动物进行检验的实验,就要求选较多的动物,以补足动物自然和认为处死所丧失的数量,---实验结束时有合乎统计学要求的动物数量存在。

(二)建立对照组:分组时应建立对照组。1.自身对照组:是指实验数据而言。实验动物本身在实验处理前、后两个阶段的各项相关数据就分别是对照组和实验组的实验结果,此法可排除生物间的个体差异。2.平行对照组:有正对照组和负对照组两种。给实验组动物某种处理,而给正对照组用同样方法进行处理,但并不采用实验所要求的或手段,负对照组则不给任何处理。3.具体分组时,应避免人为因素, 随机把所有的动物进行编号,然后令其双数为a组(实验组),单数为b组(对照组)即可或反之。如果要分若干个组时,应该用随机数字表示进行完全随机分组。





根据gb19489-2004实验室 生物 安全通用要求,动物实验室的 生物 安全要点:

动物实验室的生物安全防护设施应参照bsl1-4实验室的要求,还应考虑对动物呼吸、排泄、毛发、抓咬、挣扎、逃逸、动物实验如染毒、医学检查、取样、解剖、检验等、动物饲养、动物及排泄物的处置等过程产生的潜在生物危害的防护。应---注意对动物源性气溶胶的防护,例如对动物的剖检应在负压剖检台上进行。

应根据动物的种类、身体大小、生活习性、实验目的等选择具适当防护水平的、于动物的、符合相关标准的 生物安全柜 、动物饲养设施、动物实验设施、消毒设施和清洗设施等。

实验室建筑应---实验动物不能逃逸,非实验室动物如野鼠、昆虫等不能进入。实验室设计如空间、进出通道等应符合所用动物的需要。

动物实验室空气不应循环。动物源气溶胶应经适当的过滤/消毒后排出,不能进入室内循环。

如动物需要饮用无菌水,供水系统应可安全消毒。

动物实验室内的温度、湿度、照度、噪声、洁净度等饲养环境应符合相关标准的要求。




实验动物的选择在此,提几点原则和方法。


第,做什么样的实验?什么动物适合本实验?做什么实验,这是选题时就确定好了的。肯定是经过论证的。无需多讲。用什么样的动物呢?我想,大多是参照文献,再结合自己对实验动物的了解。选题之时就肯定阅读过很多文献了,因此不会陌生。

如:做高、动脉粥样硬化,我想大多数人会选择大鼠、兔子,也可以选金黄地鼠、鹌鹑,少数人会选小鼠,但我想用狗和猴的基本上不会有吧。因为要选择比较容易形成此---的动物,且要易得。

所以,对于不太熟悉的人来说,要多看文献,参考别人是如何选择的。就算是对动物比较了解,系统学过这方面知识的,也要多看文献,综合权衡。切忌随意地凭空想像。

第二,采取什么样的方法造模?做动物实验通常是要造模的。选择什么样的方式?这要从实验的目的及条件入手。造,可以用手术,也可以用。其中有四氧及链脲佐菌素stz。后者用得较多,且为国际认同。

而四氧目前用得较少了。造模方法一是参照《药理实验方法学》,二是参照文献。造模方法有时也决定了你的动物选择。像做手术造动脉粥样硬化,我想用大鼠比小鼠来得方便吧?

第三,经费承受能力如何?做实验也要精打细算。不可能为了所谓的高水平、技术而不顾实验室的条件。像做高脂动物模型,假设经费只有一万多元,一定要弄个敲除apoe基因的小鼠来做,恐怕没人认同。做一个简单的镇痛实验,你非得要用spf实验室,这也是不太实际的,也是没---的。






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