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动物模型的设计原则

适用性和可控性

供医学实验研究用的动物模型，在时，应尽量考虑到今后---应用和便于控制其---的发展，以利于研究的开展。如雌能终止大鼠和小鼠的早期，但不能终止人的。因此，选用雌大鼠和小鼠终止早期的模型是不适用的，因为在大鼠和小鼠筛选带有雌活性的时，常常会发现这些能终止，似乎可能是有效的---药，但一旦用于人则并不成功。所以，如果知道一个化合物具有雌活，用这个化合物在大鼠或小鼠观察终止的作用是没有意义的。又如选用大小鼠作作实验性腹膜炎就不适用，因为它们对革兰氏阴性---具有较高的抵抗力，很不容易造成腹膜炎。有的动物对某致病因子-敏感，极易，也不适用。如狗腹腔注射粪便滤液引起腹膜炎很快 80%24 小时内，来不及做实验观察，而且粪便剂量及---菌株不好控制，因此不能准确重复实验结果。

实验动物的给法

(一)注射给药法

1. 皮射 注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持将针头刺入,固定后即可进行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；---在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；蛙可在脊背部淋巴囊注射；狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按片刻，防药液逸出。

2. 皮内注射 此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。 如将一定量的性同位素溶液、颜料或致炎物质、等注入皮内，观察其消失速度和局部-循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。方法是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。

3. 肌肉注射 当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的时,常采用肌肉注射。肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。

注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无-现象即可注射。给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。

4. 腹腔注射 先将动物固定,腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0.5厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。此法大小鼠用的较多。

5. 静脉注射 是将药液直接注射于静脉管内，使其随着-分布全身,迅速奏效。但排泄较快，作用时间较短。

小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有3根， 左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替),用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张, 并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈,注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。

心率shi常模型

房室传导阻滞和房室交接区传导常性心律shi常多选用狗、猫，在ma醉开胸暴露---的情况下，于距犬心尖部1.5~ 2cm处的左室心肌内注入热生理盐水(80~90c)或95%酒精、25%---10~ 15ml (猫和兔注入4~ 7ml)，引起心肌大片的局部坏死性。也可在狗的房室交接部( 即在左心房下部、心房、下腔静脉和前房室沟三者交汇点的前上方约0. 5cm处)，用注射针头垂直刺入房间隔下部房室结区，缓缓注入95%或无水酒精2~ 5ml,造成核处组织坏死。还可采用---，自左心耳向左房内注射腺苷5 hg, ，注后1秒钟左右，即出现典型的ii度或ii度以上的传导阻滞，较---时，房室完全停搏，停搏时间与剂里呈平行关系，心率和心律仅在数秒或十几秒即可恢复。此模型重复性好，但传导阻滞持续时间短，不易用其进行观察，如果注射腺苷剂里大，则传导阻滞不易复原。除---外，腺苷对其他动物一般不引起传导阻滞。

zi宫腺肌病小鼠的yao物疗xiao及其疼痛机制

　目的：了解腺肌病小鼠的药wuzhi疗liao效及疼痛机制。

　方法：他莫昔芬法建模。以不同yao物zhi疗后，监测小鼠动情周期，检测5-ht、gnrh-r、ngf、nf的水平。

　结果：对照组5-ht水平明显高于造模组。gnrh-r及ngf在正常内膜、在位内膜的表达-低于异位内膜。nf在正常内膜的表达-低于在位内膜、异位内膜。

　结论：与全量抑那通相似，半量抑那通可减缓腺肌病进展，但对动情周期影响无明显优势。全量抑那通后使用达英-35可巩固疗xiao。5-ht可能在腺肌病疼痛机制中发挥作用。